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考马斯亮蓝 编辑
考马斯亮蓝(coomassie brilliant blue)一定范围内与蛋白质浓度成正比,因此可用于蛋白质的定量测定。
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Coomassie brilliant blue G-250
分子结构如图《Coomassie brilliant blue G-250》。考马斯亮蓝有G-250和R-250两种。
游离状态的考马斯亮蓝G250 在酸性溶液中呈红棕色 ,与蛋白质结合后呈蓝色,蛋白质含量与颜色的深浅成正比,经595nm 测定,可作出蛋白质含量与吸光度值的标准曲线,并求出未知样品的蛋白质浓度。R-250呈蓝色,有轻微红色。
考马斯亮蓝有G-250和R-250两种。其中考马斯亮蓝G-250由于与蛋白质的结合反应十分迅速,常用来作为蛋白质含量的测定。考马斯亮蓝R-250与蛋白质反应虽然比较缓慢,但是可以被洗脱下去,所以可以用来对电泳条带染色。
简介
该方法用于大多数蛋白质的定量是比较精确的,但不适用于小分子碱性多肽的定量。如核糖核酸酶或溶菌酶。去污剂的浓度超过0.2%影响测定结果,如TritonX-100、SDS、NP-40等。常用于细胞骨架的检验。
浓染液
将100mg考马斯亮蓝G-250溶于50mL 95%乙醇,加入100mL 85%的磷酸,然后,用蒸馏水补充至1000mL,此染液放4℃至少6个月保持稳定。
样本准备
尽量使用与待测样本性质相近的蛋白质作为标准品,例如测定抗体,可用纯化的抗体作为标准。如果待测样本是未知的,也可用抗体作为标准蛋白。通常在20μg—150μg/100μL之间绘制标准曲线。
溶解
将待测样本溶于100~1缓冲溶液中,该缓冲溶液应与制作标准曲线的缓冲溶液相同(最好用PBS)。
稀释
按1:5用蒸馏水稀释浓染料结合溶液,如出现沉淀,过滤除去。
作用
每个样本加5mL稀释的染料结合溶液,作用5~30min。染液与蛋白质结合后,将由红色变为蓝色,在595nm波长下测定其吸光度。注意,显色反应不得超过30min。
计算
根据标准曲线计算待测样本的浓度。
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